COLECCIÓN DE HISOPOS NASOFARÍNGEOS

Lavado nasal y recolección de hisopos

MATERIALES NECESARIOS:

  • Hisopo nasofaríngeo con punta flocada con fibra de nylon y eje de aluminio (Lawson# 63252).
  • NO USE hisopos de madera o de alginato de calcio.
  • Medios de transporte viral M6 (Lawson# 64758).

PROCEDIMIENTO

  1. Póngase un par de guantes de examen nuevos que no sean estériles.
  2. Inserte suavemente el hisopo en una fosa nasal hacia atrás (no hacia arriba), a lo largo del suelo de las fosas nasales hasta llegar a la pared posterior de la nasofaringe. La distancia de la nariz a la oreja da una estimación de la distancia a la que se debe insertar el hisopo.Nota: No fuerce el hisopado: si encuentra una obstrucción, pruebe con la otra fosa nasal.
  3. Deje el hisopo en su lugar hasta por 10 segundos.
  4. Retire el hisopo lentamente.
  5. Doble el mango del hisopo de 1.5 a 2 pulgadas hacia abajo hacia la punta del hisopo. Coloque inmediatamente el hisopo en el medio de transporte M4. Deje el hisopo en el medio de transporte. El hisopo debe estar completamente encerrado en el tubo, ningún cable debe extenderse más allá del borde del tubo. Vuelva a colocar la tapa en el medio de transporte, apriétela para evitar fugas durante el transporte.
  6. Etiquete el espécimen, colóquelo en una bolsa de riesgo biológico con la solicitud completa y envíelo al laboratorio. Transporte el mismo día, refrigerado o con hielo. Si no se espera la entrega dentro de las 24 horas, congele a -70 grados C y envíe sobre hielo seco.

Propina: Si el paciente está sentado para el procedimiento, haga que el paciente se siente con la cabeza contra la pared, ya que los pacientes tienden a alejarse durante el procedimiento.

LAVADO NASOFARÍNGEO SIN ASPIRACIÓN MECÁNICA

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OBJETIVO: Recolectar células epiteliales respiratorias ciliables cilíndricas de la nasofaringe posterior para pruebas virales

MATERIALES NECESARIOS:

  • Equipo de protección personal
  • Pañuelos faciales
  • La solución salina estéril no bacteriostática (p. ej. balas)
  • Bolsas sellables para riesgos biológicos
  • Recipiente de muestras estéril que se puede cerrar (p. ej. recipiente de orina estéril)
  • Contenedor de envío con paquete de frío (clínicas externas o clientes externos)
  • Método de la jeringa:
  • Jeringa desechable estéril de 3-5 ml
  • Catéter blando estéril (p. ej. #8 sonda de alimentación francesa suave). La base del tamaño de la jeringa y la longitud del tubo dependen de la edad y el tamaño del paciente.
  • Método de la bombilla: bombilla de goma estéril de punta cónica de 1-2 oz

MÉTODO DE RECOLECCIÓN

NOTA: Si es posible, use dos proveedores de atención médica para esta técnica, uno para sostener al paciente y el otro para recolectar la muestra.

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  1. Póngase el EPP. Limpie el exceso de mucosidad de la nariz del paciente con un pañuelo facial.
  2. Llene la jeringa con 1-4 ml de solución salina. La cantidad depende del tamaño y la edad del paciente. Conecte el tubo a la punta de la jeringa.
  3. Incline la cabeza del paciente hacia atrás ligeramente más allá de la "posición de olfato". Indique a los pacientes mayores que no traguen.
  4. Instilar solución salina en una fosa nasal mientras se mantiene cerrada la segunda fosa nasal.
  5. Aspire el líquido suavemente mientras retira y gira el tubo para desalojar las células y las secreciones.NOTA: La recuperación debe ocurrir rápidamente o el líquido instilado drenará rápidamente por la garganta.
  6. Inyecte la muestra en el recipiente. Repita con la otra fosa nasal e inyecte la muestra en el mismo recipiente.
  7. Etiquete el recipiente y colóquelo en una bolsa de riesgo biológico. Deseche las jeringas y los tubos o perillas en los desechos de riesgo biológico.
  8. Coloque la muestra en un tubo inmediatamente en el laboratorio o envíela en hielo húmedo.

LAVADO NASOFARÍNGEO CON ASPIRACIÓN MECÁNICA

Lavado nasal y recolección de hisopos

OBJETIVO: Recolectar células epiteliales respiratorias ciliables cilíndricas de la nasofaringe posterior para pruebas virales

MATERIALES NECESARIOS:

  • Equipo de protección personal
  • Pañuelos faciales
  • La solución salina estéril no bacteriostática (p. ej. balas)
  • Bomba de succión o succión de pared
  • Trampa de succión Delee con catéter de succión adjunto
  • Edad del paciente Tamaño del catéter Presión de succión
    • Prematuro 6 80-100 mm Hg
    • Bebé/Niño pequeño 8 80-100 mm Hg
    • Edad escolar 10 100-120 mm Hg
  • Bolsas sellables para riesgos biológicos
  • Contenedor marítimo con paquete de frío (clientes externos)
Lavado nasal y recolección de hisopos

MÉTODO DE RECOLECCIÓN

NOTA: Si es posible, use dos proveedores de atención médica para esta técnica, uno para sostener al paciente y el otro para recolectar la muestra.

  • Póngase el EPP. Elimine el exceso de mucosidad de la nariz del paciente con un pañuelo facial.
  • Determine la longitud del catéter de succión midiendo la distancia desde la punta de la nariz hasta la abertura del oído externo. Marca con el pulgar y el índice.
  • Conecte la trampa al tubo de succión, dejando la envoltura en el catéter de succión. Ajuste la succión a la presión adecuada.
  • Incline la cabeza del paciente hacia atrás ligeramente más allá de la "posición de olfato". Indique a los pacientes mayores que no traguen.
  • Añadir 0,5-4 ml de solución salina en la fosa nasal (la cantidad depende del tamaño del paciente) para aflojar las secreciones y desalojar las células.
  • Inserte suavemente el tubo en la fosa nasal y la faringe posterior hasta que el pulgar y el índice toquen la nariz del paciente. NOTA: No use lubricantes que no sean solución salina para ayudar a la inserción del tubo.
  • Aplique succión mientras retira y gira el tubo. Sostenga la trampa en posición vertical para evitar la pérdida de secreciones de la trampa. NOTA: El catéter no debe permanecer en la nasofaringe más de 10 segundos
  • Repita el procedimiento para la segunda fosa nasal.
  • Desconecte la succión. Retire la tapa con el tubo y colóquela en los desechos de riesgo biológico.
  • Coloque una nueva tapa en la trampa. Etiquete la trampa y colóquela en una bolsa de riesgo biológico.
  • Coloque la muestra en un tubo inmediatamente en el laboratorio o envíela en hielo húmedo.

Ilustraciones e instrucciones proporcionadas por BECTON DICKINSON & CO., Cockeysville, MD Rev 03/30/05